兔肌球蛋白重链9(MYH9)ELISA试剂盒

2024-07-02 11:23:38
兔肌球蛋白重链9(MYH9)ELISA试剂盒


 






间接ELISA:本法主要用于检测。(DVH)的ELISA为例,间接ELISA的操作程序如下。⑴ 材料① 包被液、洗涤液、保温液、底物液、终止液;② DVH包被抗原、酶标抗、阴性及阳性DVH参考;待检鸭;③ ELISA检测仪、加样器、聚微量板。⑵ 步骤① 加抗原包被 → 4℃过夜,洗涤三次、抛干② 加待检 → 37℃ 2小时,洗涤三次、抛干③ 加酶标 → 37℃ 2小时,洗涤三次、抛干④ 加底物液 → 37℃ 30分钟,加终止液⑤ 用ELISA检测仪测定OD值,并计算出P/N比值。⑶ 结果判定 已知阳性与已知阴性的比值(P/N)≥2.1,而且已知阳性的OD值≥0.4;在上述条件成立的情况下,如果待检与已知阴性的比值(P/N)≥2.1,而且待检的OD值≥0.4,则判为阳性,否则判为阴性。



90分钟一步法ELISA试剂盒:1.,灵敏,特异的,2,的重复性和可靠性;3吸附性能好,空白值低,孔底度和固相







ELISA试剂盒在国内有许多种叫法,例如:ELISA检剂盒、ELISA Kit、酶联试剂盒、酶联吸附测定试剂盒、酶联分析试剂盒、酶剂盒等,比较常见的叫法是ELISA检剂盒、酶联吸附测定试剂盒等。

ELISA试剂盒自从60-70年代问世以来,全 科研工作者的认可及推崇,在欧美及很大的推广,尤其是国内生化领域的长足发展。

Elisa生物试验是一种性高,特强,重复性好的实验诊断。由于其试剂、易保存,操作简便,结果判断较客观等因素,已广泛应用在学检验的各领域中。ELISA检剂盒适用于体外定性检测人或中的抗人类(HEV) IgM ELISA检测。





ELISA检剂盒应用定性夹心检测技术,用合成的HEV多肽抗原包被微孔板板条,这些多肽是型HEV毒株核心酸序列中抗原性很强的肽段,分别来自于该毒株的开放阅读框2和开放阅读框3。将样品或品加入孔中并孵育,如果其中存在HEV IgM,这些就会与HEV 的多肽抗原结合,并固定在上面,洗板除去其它非特和样品中的其它成份。然后加入羊抗人IgM-HRP(辣根过氧化物酶)酶结合物,经 次孵育后,酶结合物就会与 次孵育结合上的HEV IgM相结合,洗板除去未结合的酶结合物,加入TMB底物溶液,在第三次孵育时会发生酶-底物反应,只有那些含有HEV IgM和酶结合物所形成的复合物的孔才会发生颜色变化,加入溶液终止酶和底物间的反应,并在波长: 450nm处测量O.D.值,按照本HEV IgMelisa试剂盒的, O.D.值大于或等于Cut-Off值的样品被认为是初试阳性。










 


兔肌球蛋白重链9(MYH9)ELISA试剂盒


用途:



ELISA的基础是抗原或的固相化及抗原或的酶标记。结合在固相载体表面的抗原或仍保持其学活性,酶标记的抗原或既保留其学活性,又保留酶的活性。在测定时,受检标本(测定其中的或抗原)与固相载体表面的抗原或起反应。用洗涤的使固相载体上形成的抗原复合物与中的其他分开。再加入酶标记的抗原或,也通过反应而结合在固相载体上。此时固相上的酶量与标本中受检的量呈一定的比例。加入酶反应的底物后,底物被酶催化成为有色产物,产物的量与标本中受检的量直接相关,故可根据呈色的深浅进行定性或定量分析。由于酶的催化效率很高,间接地放大了反应的结果,使测定达到很高的度。 ELISA可用于测定抗原,也可用于测定。


然而,影响Elisa试验结果的因素很多,故加强各个环节的才能充分发挥其学的优点。








产品特点:



一、、灵敏、特异的;

二、的重复性和可靠性;

三、吸附性能好,空白值低,孔底度高的固相载体;

四、适用、、组织匀浆液、细胞上清液、等等多种标本类型;

五、节省实验经费。

elisa试剂盒回收率是反应待测物在样品分析中的损失的程度,损失越少,回收率越高,如果作标液1PPM,就是1毫克/升,而作出数据为0.99毫克/升,就是说你的回收率是99%,这个与真实成分有密切的关系,说明的准确度。比如水中总无机氯含量测定,样品水中含有无机氯20mg/L,取100mL被测水样品,加入0.1mL浓度为10mg/mL的含无机氯样品,测定时忽略体积变化,如果测定出样品中无机氯为29.8mg/L,则认为回收率为99%。






竞争ELISA:此法主要用于测定小分子抗原及半抗原,其原理类似于放射测定。其基本程序为:① 包被 → 4℃过夜,洗涤三次、抛干② 加入待检抗原及一定量的酶标抗原(对照孔仅加酶标抗原)→ 37℃ 60分钟,洗涤三次、抛干③ 加底物液 → 37℃ 20分钟,加终止液④ 用ELISA检测仪测定OD值。被结合的酶标抗原的量由酶催化底物反应产生有色产物的量来确定,如果待检溶液中抗原越多,被结合的标记抗原的量就越少,有色产物就,这样根据有色产物的变化就可求出未知抗原的量。此法的优点在于快速、特高、且可用于小分子抗原及半抗原的检测;其主要不足在于每种抗原都要进行酶标记,而且因为抗原的结构不同,还需应用不同的结合。此外,试验中应用酶标抗原的量较多。






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